1. ANTECEDENTES
La description de ToLCNDV a été faite dans les années 90 en Inde, touchant la culture de la tomate, où il est devenu l’un de ses principaux agents phytopathogènes (Paddidan et al., 1995). Ces dernières années, le nombre d’hôtes et de familles de cultures a considérablement augmenté, affectant les cucurbitacées et autres solanacées, ce qui en fait un problème émergent dans des pays tels que le Pakistan, le Bangladesh, la Thaïlande, l’Indonésie et l’Iran.
En ce qui concerne l’Espagne, il a été identifié pour la première fois au milieu de l’année 2012 dans les cultures de courgettes dans la région de Murcie (Juárez et al., 2014), pour être ensuite identifié à Almería et à Malaga, aussi bien dans les cultures protégées que dans les cultures en plein champ.
Selon les rapports, parmi les vingt-quatre cultures les plus touchées, le melon et la courgette se distinguent particulièrement.
La propagation accélérée de ce virus vers les littoraux méditerranéens est probablement due au chevauchement des cycles de production des monocultures sensibles en été, où les températures favorisent et accélèrent les cycles de vie de la Bemisia tabac sur toute la région méditerranéenne, cette mouche blanche étant le vecteur responsable de sa transmission.
2. SITUATION PÉNINSULAIRE
Les études sur la séquence génomique des isolats espagnols de ToLCNDV montrent qu’il s’agit d’une nouvelle souche appelée ToLCNDV-ES, qui aurait pu évoluer par recombinaison (Fortes et al., 2016; Ruiz et al., 2017a).
Ces isolats présentent, en outre, une forte identité de séquence et forment un groupe homogène, probablement en raison d’un seul événement d’introduction récent. Il s’agit là d’un phénomène typique qui se produit lorsqu’une plante devient un nouvel hôte. Par conséquent, on peut conclure que la population espagnole (et peut-être aussi l’ensemble de la population européenne et nord-africaine) de ToLCNDV a été constituée par un seul isolat (Zaidi et al., 2017).
3. SYMPTOMATOLOGIE DU MELON
En général, le virus de New Delhi provoque un mosaïque marquée avec des effets chlorotiques sur les feuilles supérieures et moyennes, tandis que les plus jeunes se plient vers le dessous ou le dessus de la feuille.
En ce qui concerne le melon, on peut noter que sur les feuilles jeunes, il y a une distorsion vers le dessous et des jaunissements internervaux et marginaux se marquent, accompagnés d’une perte de vigueur de la plante due au raccourcissement des entre-nœuds.
En ce qui concerne la symptomatologie aux stades avancés de la fructification, le fruit peut présenter des fissures et des affaissements.
4. CARACTERIZACIÓN DEL VECTOR
Comme nous l’avons mentionné, sa principale transmission se produit par le biais de la mouche blanche, Bemisia Tabaci, de manière persistante et circulative (Sohrab et al., 2003).
Traditionnellement, la mouche présente dans la péninsule était composée d’espèces cryptiques invasives MEAM1 du Moyen-Orient et MED (Méditerranée) connues sous les biotypes B et Q, bien que récemment, des études phylogénétiques sur les cultures de cucurbitacées de différentes populations dans le sud-est espagnol précisent que la plupart sont de la Méditerranée Med-Q1.
Mais ce vecteur ne se limite pas à cette transmission, il peut également propager, en plus du virus de New Delhi, le virus des veines jaunes (CVYV).
5. MESURES PREVENTIVES EN CULTURE DE PLEIN CHAMP
Le problème de la culture en plein champ des cucurbitacées, en particulier des melons, est évident par rapport à celle en serre. Dans ce dernier cas, des mesures d’étanchéité sont mises en place, ce qui entraîne une présence ou une arrivée beaucoup plus faible du vecteur aux plantes. En fait, il n’y a qu’une incidence moyenne de 1 sur 15 plantes dans cette zone de culture sous serre à Almería. C’est là que leur culture est réalisée de manière protégée en raison de leur cycle, en plus de présenter une plus grande adaptabilité pour l’installation d’Amblyseius swirskii, un prédateur naturel des mouches.
En ce qui concerne les mesures à prendre pour réduire les incidences et la gravité de la culture en plein champ, nous mettrons en avant les pratiques générales suivantes :
1. Utilisation de couvertures en agrotextiles : Il s’agit d’une bonne mesure pour protéger les premières étapes d’une culture en plein champ, surtout pendant les mois les plus chauds. Elles doivent être suffisamment larges et bien scellées sur les côtés. Elles peuvent également être placées à l’intérieur des serres lorsqu’elles ne disposent pas d’un filet approprié pour empêcher l’entrée du vecteur.
2. Maintenir un contrôle adéquat du vecteur jusqu’à la fin des cultures. Il s’agit d’une mesure très importante que les agriculteurs doivent prendre, que ce soit avec des ennemis naturels ou avec des traitements chimiques intégrés.
3. Éliminer les cultures contaminées. Si des populations élevées d’insectes vecteurs (pucerons et mouches blanches) et de plantes présentant des symptômes de ce virus ou d’autres sont présentes, il est conseillé d’effectuer un traitement avec un insecticide adulte ou avec un insecticide associé à un dessicant, et d’éliminer la culture, soit en l’enterrant soit en la retirant de manière contrôlée de l’exploitation.
4. Effectuer des traitements préventifs avec des élicitateurs afin de réduire ou d’atténuer le niveau d’incidence ou de gravité du virus.
5. Ne pas placer de nouveaux cultures à côté de cultures contaminées.
6. Ne jamais superposer différents cycles de culture.
7. Effectuer une biofumigation ou une biosolarisation si le terrain et les conditions le permettent.
8. Si les exploitations ne disposent pas de clôtures efficaces ou sont en plein air, il est très important que tous les agriculteurs réalisent un contrôle adéquat du vecteur, avec des produits intégrés, jusqu’à la fin de la culture, afin de favoriser le contrôle biologique et d’éliminer rapidement et correctement les plantes malades, ainsi que de maintenir les parcelles propres entre les cycles de culture en éliminant les résidus des cultures précédentes et les mauvaises herbes qui pourraient héberger et multiplier le virus et le vecteur.
6. PROPOSITION CULTIFORT – L’UTILISATION DU CHITOSANE
6.1. Efficacité indirecte
Le chitosane, avec ses diverses propriétés, est un agent antiviral qui peut supprimer les infections virales chez les plantes. Son efficacité dépend de facteurs tels que le degré de polymérisation, de désacétylation et de charge positive, ainsi que de modifications chimiques. Il peut inactiver les particules virales et empêcher la multiplication des bactériophages dans les cultures infectées. En imitant le contact des plantes avec les agents pathogènes, il induit des réactions de protection, limitant la propagation des virus et favorisant la résistance systémique acquise. L’efficacité varie en fonction de la combinaison hôte-virus, de la concentration et de la méthode d’application.
En outre, le chitosane active les réactions de défense des plantes, telles que la synthèse de la lignine et de la callose, la production d’enzymes et de protéines liées à la pathogénicité, renforçant ainsi la résistance aux infections virales.
6.2. Efficacité directe
La liaison de la chitosane avec l’ADN et l’inhibition de la synthèse de l’ARNm se produisent par la pénétration de la chitosane dans le noyau des micro-organismes et l’interférence avec la synthèse de l’ARNm et la synthèse des protéines (Sudarsham et al., 1992).
6.3. Cultisano
CULTISANO est une solution liquide contenant de la chitosane (poly-D-glucosamine), un polymère naturel dérivé des coquilles de crustacés, combinée avec des acides aminés obtenus par hydrolyse enzymatique des protéines végétales.